Nature重磅:工程化免疫调节树突状细胞(iCDC)开启心衰免疫治疗新范式!

发布于: 2026-08-24 10:36

Nature重磅:

工程化免疫调节树突状细胞(iCDC)开启心衰免疫治疗新范式!






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     背景     

伴随人口老龄化进程加速及多种危险因素叠加暴露,心力衰竭所导致的疾病负担持续攀升,成为亟待解决的全球公共卫生难题,预测至2030年心力衰竭患病率将升高46%[1-3]。尽管现阶段心力衰竭的治疗方案已取得一定进展,但患者确诊后的5年生存率仍不足50%,临床亟需全新的靶向治疗手段[4-5]。已知心脏重构是心力衰竭发生发展的核心病理环节[6-7]:心肌受损后,免疫细胞与心肌细胞相互作用,进而启动机体免疫应答。急性期炎症反应可发挥短期心脏保护作用,而炎症调控失衡则会诱发病理性心脏重构,最终进展为不可逆心力衰竭。由此可见,调控心肌局部炎症微环境是极具潜力的心衰治疗方向。

树突状细胞(dendritic cells, DCs)疗法近年来已成为免疫学与再生医学交叉领域的研究热点。DCs作为连接固有免疫与适应性免疫的专职抗原提呈细胞,在免疫应答启动与耐受维持中处于核心枢纽地位[8]。其中,耐受性树突状细胞(tolerogenic dendritic cells, tolDCs)可通过多种机制发挥免疫抑制作用,如分泌调节性细胞因子、表达共抑制分子、诱导调节性T细胞(regulatory T cells, Tregs)分化等,成为心力衰竭等慢性炎症性疾病中调控病理性炎症、促进组织修复的理想细胞载体。然而,该疗法的临床转化长期面临两大核心瓶颈:其一,未成熟或耐受性DCs在体内炎性微环境中表型稳定性差,极易受炎症信号驱动,丧失免疫抑制功能并转为免疫激活表型;其二,DCs经静脉输注后难以高效归巢至受损心肌,局部有效浓度不足,严重限制了其治疗窗口[9-10]。


2026年4月发表于《Nature》正刊的一项研究中,研究团队针对上述难题,开发了一种工程化树突状细胞平台——称为iCDCs(engineered immunosuppressive and fibrosis-targeted DCs),该平台表达免疫抑制性嵌合抗原受体(chimeric antigen receptor, CAR)样结构。该研究首次成功构建了兼具病灶靶向与多重免疫调节功能的工程化DC平台:通过慢病毒介导的多重基因改造,使DCs携带成纤维细胞活化蛋白(fibroblast activation protein, FAP)特异性单链可变片段(single-chain variable fragment, scFv),并持续共表达细胞毒性T淋巴细胞相关抗原4免疫球蛋白融合蛋白(cytotoxic T lymphocyte-associated antigen 4-immunoglobulin, CTLA4-Ig)、程序性死亡配体1( programmed death-ligand 1, PD-L1)及白细胞介素-10(interleukin-10, IL-10)。该设计可在心肌病灶局部实现特异性抑制病理性免疫应答与纤维化,同时保留机体全身免疫功能。研究首次从功能上证明,FAP-scFv介导的病灶靶向与CTLA4-Ig/PD-L1/IL-10三重免疫调节通路的协同作用,是工程化DC发挥心脏保护效应的必要且充分条件——缺失任一组件,治疗活性即完全丧失。


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FAP靶向的免疫抑制性DC的构建和体外功能验证      

研究通过慢病毒载体介导,使细胞共表达FAP-scFv、CTLA4-Ig、PD-L1与IL-10,由此构建得到iCDC。在脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)联合肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor, TNF)的高强度炎症刺激条件下,iCDC可稳定抑制共刺激分子CD80/CD86及主要组织相容性复合体II类分子(major histocompatibility complex class II, MHC-II)的表达,同时显著高表达抑制性检查点T细胞免疫球蛋白黏蛋白分子3(T-cell immunoglobulin and mucin domain-containing protein 3, TIM3)。该细胞表型有效规避了传统耐受性DC的固有弊端,突破了其在炎症微环境中极易发生异常成熟、功能失稳的关键瓶颈。为系统验证iCDC的治疗效能与转化价值,本研究建立了完整的实验验证体系:采用小鼠心肌梗死(myocardial infarction, MI)、心肌缺血再灌注(ischaemia-reperfusion, I/R)损伤以及主动脉弓缩窄(transverse aortic constriction, TAC)压力超负荷三种经典心血管模型,深入阐释iCDC的治疗作用及分子机制;同时依托非人灵长类(non-human primate, NHP)心肌梗死模型,进一步评估其临床转化效果与应用安全性。

图1 iCDC工程化设计及其耐受性表型的体外验证


转录组测序结果进一步证实,iCDCs可系统性抑制NF-κB(核因子κB,nuclear factor kappa-B)、MAPK(丝裂原活化蛋白激酶,mitogen-activated protein kinase)、IL-17(白细胞介素-17,interleukin-17)等经典促炎及趋化信号通路,同时显著富集抗炎通路与调控Treg细胞分化的相关通路。

图2 iCDC中促炎与趋化通路系统性抑制的转录组学证据


功能学验证结果表明,iCDCs能够显著抑制T细胞增殖,并介导T细胞亚群发生定向重编程:下调致病性辅助性T细胞17和效应记忆T细胞的比例,促进T细胞向保护性调节性T细胞与初始T细胞极化,最终完成T细胞免疫格局由促炎表型向免疫耐受表型的功能性重塑。

图3 iCDC对T细胞增殖抑制及亚群重编程的体外功能验证


在机制探究部分,研究通过中和抗体干预实验剖析介导Treg分化的关键分子条件。体外共培养体系中分别加入IL-10、CTLA 4以及PD-L1特异性中和抗体进行单一阻断。实验结果表明,单独抑制任一分子即可显著削弱iCDC诱导Treg生成的能力,Treg诱导效率基本丧失,由此证实IL-10、CTLA 4与PD-L1依靠协同模式共同介导免疫耐受。综上,依靠FAP实现靶向富集,并通过IL-10、CTLA 4、PD-L1协同作用是iCDC发挥免疫抑制功能的核心要素,为后续体内动物实验阐释iCDC的治疗潜力奠定扎实的分子理论基础。

图4 CTLA4-Ig/PD-L1/IL-10三重协同诱导Treg的机制验证与模型总结


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FAP靶向iCDC细胞的体内功能验证                       

研究者利用MI、I/R和TAC这三种小鼠模型进行了FAP靶向iCDC细胞的体内功能验证。空间转录组分析显示FAP在梗死后3~7天于梗死区高表达,为术后第3天给药提供了依据。活体成像则进一步证实,只有携带FAP-scFv的iCDCs能特异性归巢至损伤心脏,表明靶向组件是心脏归巢的唯一决定因素。

图5 FAP在心肌损伤后的时空表达动态及iCDC的FAP依赖性靶向归巢


在这种精准靶向的基础上,iCDCs在MI和I/R两种缺血模型中均表现出三重强大疗效:改善收缩功能、减轻整体及远程纤维化、保护心肌并促血管新生。

图6 iCDC对MI后心脏重构的多重保护效应及其FAP靶向依赖性验证


在I/R模型中,iCDC介导的心脏保护效应甚至能够持续维持至术后12周。最关键的是,无论是携带三重免疫调节因子(CTLA4-Ig、PD-L1、IL-10)但缺乏FAP-scFv的CPIDC,还是空载体vecDC,在所有检测指标上均与未治疗MI组无显著差异,表明FAP-scFv介导的病灶靶向是iCDC实现抗纤维化、诱导血管新生及改善心功能不可或缺的前提条件。

图7 iCDC在I/R模型中的长期抗纤维化与心功能保护效应


前述研究已经证实iCDC对MI以及I/R诱导的缺血性心脏病具备显著治疗效果,但临床当中相当一部分心力衰竭患者并非冠状动脉闭塞所致,而是长期高血压引发压力超负荷造成。基于该临床现状,本研究进一步构建小鼠TAC模型开展补充验证。活体成像结果证实,FAP-scFv介导的靶向归巢效应在非缺血性心脏损伤模型中依旧成立。在常规TAC模型中,两次输注iCDC可明显改善心脏收缩功能、缓解心肌间质纤维化并延长小鼠存活时间。更具临床意义的是,即便在心衰晚期,左心室射血分数(left ventricular ejection fraction, LVEF)≤40%的TAC模型里,iCDC干预4周即可逆转心功能衰退、抑制纤维化进程、促进血管再生并延长小鼠生存期。以上结果证实iCDC对已经成型的心力衰竭仍具有治疗作用,显著提升了临床转化前景。

图8 iCDC在TAC压力超负荷心衰模型中的靶向归巢、功能保护及晚期挽救效应



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     总结     

该研究构建的iCDC是首个将“病灶靶向(FAP-scFv)”与“多重免疫重编程(CTLA4-Ig/PD-L1/IL-10)”整合于一体的工程化DC平台,其核心创新在于:首次证明DC可不依赖T细胞直接抑制先天免疫与基质细胞活化,同时通过诱导心脏局部Treg的抗原驱动性克隆扩增建立长期免疫耐受,该策略不杀伤成纤维细胞,安全性更优、同时兼具促血管新生效应,为心衰干预开辟了病灶靶向式免疫重塑新范式。研究涵盖的体外细胞培养、分子学检测以及体内动物模型验证等全部实验内容,均可依托百洋智心完备的心血管转化医学研究平台进行。

百洋智心研究平台介绍


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细胞研究平台 

配备多间独立专属细胞操作实验室,标准化完成原代细胞分离培养、冻存复苏与免疫荧光检测;定量评估增殖、迁移、凋亡生物学特征,打造适配体外高通量药物筛选、基因工程细胞功能验证的高水平体外研究平台。

提供专业技术服务,可分离健康小鼠、心肌肥大、心衰模型成年小鼠心肌细胞,成杆率可稳定达90%以上。并具有成人原代心肌细胞分离试剂盒、成人原代心肌细胞培养试剂盒、成人原代心肌细胞冻存试剂盒、人原代成纤维细胞分离/培养试剂盒等多种产品销售,以及专业成人原代心肌细胞分离服务。

图9 细胞研究平台示意图及百洋智心成人原代心肌细胞分离试剂盒REF:AP0101-AP0103活率检测试剂盒使用效果图

A.细胞研究平台示意图;B.使用本产品检测成人原代心肌细胞活率图示,活细胞染色(钙黄绿素-AM )较多,死细胞染色(乙锭同源二聚体-1 )较少;C.B图相同视野下的心肌细胞明场图示;D.使用本产品检测加药处理后的成人原代心肌细胞活率图示,活细胞染色(钙黄绿素-AM )较少,死细胞染色(乙锭同源二聚体-1 )较多;E.D图相同视野下的心肌细胞明场图示 。

(注:本试剂盒中不提供成人原代心肌细胞分离试剂,如有分离原代心肌细胞的需要,可向百洋智心订购成人原代心肌细胞分离试剂盒REF:AP0101-AP0103。实际结果会因实验条件、检测仪器等的不同而存在差异,图中数据仅供参考)。

02

分子生物学平台 

配备全套高端分子实验设备,稳定开展核酸与蛋白提取、质粒构建纯化、蛋白质免疫印迹法(western blotting, WB)、琼脂糖凝胶电泳、聚合酶链式反应(polymerase chain reaction, PCR)及实时荧光定量PCR(quantitative real-time PCR, qPCR)试验等等,为分子机制解析提供严谨可靠的实验条件。

除此之外,实验室配置集多种成像技术于一体的多功能共聚焦系统——蔡司LSM 990。该设备搭载Airyscan 2超分辨检测模块,可实现低光毒性超分辨成像,最高可达 90nm分辨率,清晰捕捉细胞骨架、纤毛、突触、亚细胞微结构等精细结构。系统支持 380–900nm全光谱Lambda采集,单次扫描即可同时拆分十余种荧光信号,高效完成多色标记实验,轻松去除样品自发荧光干扰;高灵敏检测器大幅提升图像信噪比,大幅降低激光照射强度,适配组织切片、胚胎、活细胞等易光损伤样品长时间三维动态观测。倒置平台兼容玻片、培养皿、多孔板多种样品,可开展三维重构、时序动态追踪、大视野拼接成像等实验。欢迎咨询相关预约服务。

图10 分子生物学平台及配套全流程专业设施

A.分子生物学平台示意图;B.PCR仪;C.发光凝胶成像仪;D.实时荧光定量PCR仪;E.电泳套装;F.ZEISS LSM 990 激光扫描共聚焦显微镜;G.三日龄小鼠原代类器官[11]。小肠的分泌细胞在顶端F-肌动蛋白刷状缘上产生孔洞。DAPI(白色):DNA,鬼笔环肽(绿色):F-肌动蛋白,UEA-1(红色):分泌细胞(潘氏,杯状),COX-1(紫色):簇细胞;H.果蝇睾丸中的精子鞭毛[11]。DAPI(蓝色):细胞核和精子,鬼笔环肽(红色):F-肌动蛋白。

03

单细胞测序平台

本中心搭载ICELL8 cx专属系统,凭借大口径分离喷嘴突破细胞体积限制,适合任意尺寸细胞,且完美适配心肌细胞这类大体积细胞;仅需15分钟即可高通量完成8组样本并行处理,在心血管单细胞研究领域具备显著硬件优势。此外,ICELL8 cx系统允许用户在孔中可视化分离的心肌细胞,并决定是否进行处理。单张芯片最多可获取106个细胞,以获得足够浓度的文库样本。

图11 单细胞测序平台及相关效果展示图

A.ICELL8 cx系统;B.ICELL8芯片微孔中心肌细胞示例[12]。

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大数据与生物信息学分析平台

依托专职生信分析团队,提供单细胞转录组、基因组及表观遗传组学深度解析服务,精准开展细胞分群、通路富集、免疫微环境解析,深度挖掘潜在科学机制。

图12 提供单细胞转录组、基因组、表观组等深度全流程分析

A.展示差异基因表达;B.展示细胞聚类结果,辅助细胞类型注释;C.展示所有细胞群之间的信号流,识别细胞间通信,可视化互作网络;D.组学结合分析,可以用于比较不同细胞在同一区域染色质开放程度的差异,理解调控基因的 ATAC 信号动态;E.细胞在不同时间段的差异基因进行功能注释,揭示动态生物学过程及时序性功能变化。

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SPF 级实验动物平台

平台为标准化屏障设施,可饲养SPF级实验大小鼠;技术团队熟练构建小鼠心肌梗死(myocardial infarction, MI)及主动脉弓缩窄(transverse aortic constriction, TAC)压力超负荷经典心血管模型,拥有体视显微镜、小动物呼吸机、气体麻醉机相关模型构建全套设施,并配备新款Vevo F2小动物超声设备,实时动态评估心脏功能,一体化完成动物造模、日常饲养、功能检测及样本采集工作。可预约小鼠相关模型构建服务,及腹腔注射、尾静脉注射、眼眶采血等多项动物实验技术服务,欢迎咨询。

图13 SPF级实验动物平台示意图及专业设施设备

A.小鼠/大鼠独立通风笼盒(individually ventilated cage, IVC)系统;B.SPF级实验动物平台示意图;C.体视显微镜;D.小动物呼吸机;E.气体麻醉机;F.Vevo F2小动物超声成像平台。

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参考文献:

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